随着畜牧业的迅猛发展，各种兽药的使用量和排放量与日俱增，由此带来的环境问题也日益受到人们的关注。调查表明，我国使用的兽药中，抗微生物类用药占主导地位，市场份额约占60%以上，其中磺胺类、大环内酯类和喹诺酮类使用较多^[1]。磺胺类药物是一类具有对氨基苯磺酰胺结构、以磺酰胺为代表的各种衍生物的总称^[2]，通常作为动物饲料添加剂以亚治疗剂量添加到动物饲料中，是我国生产量和使用量最大的兽药之一^[3]。在长期使用过程中，细菌对磺胺类药物较容易产生抗药性，为了达到好的治疗效果，其使用量越来越大，而这些药物不会被动物体完全吸收，有50%~90%的药物以原药或代谢物形式随粪便排出体外^{[4, 5, 6]}。Elena等^[7] 调查了奥地利施用畜禽粪的农用土壤中磺胺类兽药的残留含量为20 mg·kg^-1；李彦文等^[8] 调查得到菜地土壤中磺胺类兽药的平均残留含量为121 μg·kg^-1；唐才明等^[9]、马丽丽等^[10]调查得到河水污灌区土壤和底泥中磺胺甲噁唑的残留含量为21.3 μg·kg^-1。研究表明，磺胺类兽药原药及其代谢产物随动物粪尿进入环境后，很难完全转化和降解，经非生物和生物作用逐渐积累，对土壤生态和水环境等带来影响，并最终会通过食物链影响人体健康^[11]。

目前，对于磺胺类药物污染的研究主要集中在个体水平的生态毒理效应和迁移转化等环境行为，以及对土壤环境的影响，关于其遗传毒性方面的研究开展得较少。生物细胞微核、染色体畸变、有丝分裂指数等细胞遗传学指标被公认为是评价环境化学物质遗传性的有效方法之一^[12]，其中微核试验具有敏感度高、快速经济、不需要精尖技术等优点^[13]，在环境监测中应用较为广泛。Ma^[14]认为高等植物对环境中污染物引起的生物诱变和基因毒性最为敏感，且植物常被用于生物基因毒性测试和相关的土壤评估^{[15, 16]}。目前关于遗传毒性的研究中，针对重金属和有机污染物开展得较多，而兽药方面的研究较少。本研究在不同浓度的磺胺类兽药单一及复合污染处理下，通过测定玉米、蚕豆、小麦根尖细胞的微核效应，判断其遗传毒性，旨在为研究磺胺类兽药复合污染对作物遗传毒性的影响奠定理论基础。 1 材料与方法 1.1 试验材料

玉米、小麦和蚕豆种子均购于北京开心农场种子公司。 磺胺嘧啶（SD）和磺胺间甲氧嘧啶（SMM）购于北京博亚华牧业科技有限公司；磺胺甲噁唑（SMZ）购于寿光富康制药有限公司。3种药品纯度均≥99％。 1.2 试验方法 1.2.1 单一兽药胁迫试验

选取籽粒饱满、均匀的玉米、蚕豆、小麦种子于蒸馏水中浸泡24 h，待种子吸水膨胀后用纱布包裹置于30 ℃培养箱中培养，每12 h换水一次，待根尖长至1~2 cm时，分别选取发育良好，根尖粗细一致的种子备用。

将3种兽药分别配制成浓度为1、5、10、50、100 mg·L^-1的溶液，以蒸馏水作为阴性对照（CK^-），以5 mg·L^-1的NaN₃作为阳性对照（CK⁺）。将种子放入不同浓度磺胺类兽药的处理液中浸泡，染毒8~24 h，将染毒后的种子洗净并置于蒸馏水中恢复培养24 h；切下约1 cm长的根尖，卡诺固定液固定24 h后，置于70%乙醇中，放入4 ℃冰箱中可保存数月。实验时将根尖取出，蒸馏水洗涤2次后置于1 mol·L^-1的盐酸中，于60 ℃水浴解离8~10 min，至根尖呈乳白色取出，然后放入蒸馏水中冲洗3次，每次5 min；用shiff试剂染色30 min后漂洗制片，在显微镜下观察。

每个处理每种作物选取5个根尖，每个根尖观察不少于1000个细胞，统计细胞的微核数。微核率用观察到的微核数占观察细胞的千分率（MCN）表示，微核千分率=微核数/观察细胞数×1000‰。最终结果取5组根尖观察结果的平均值。 1.2.2 复合兽药胁迫试验

将配置好的3种兽药溶液两两等量等浓度混合，然后进行作物根尖染毒、固定、解离、染色、观察，方法与单一兽药处理相同。 1.3 数据处理

采用SPSS软件进行方差分析和F检验。 2 结果与讨论 2.1 单一兽药胁迫对不同作物根尖细胞微核率的影响

磺胺类兽药对作物产生的毒害作用在个体和细胞分子水平都有所表现。在浓度为1~5 mg·L^-1时，对作物根尖的生长没有明显的毒性，从10 mg·L^-1开始，根尖生长缓慢并开始变黄，浓度达到100 mg·L^-1时，根尖颜色加深并开始变硬，水解效果变差，细胞分散程度逐渐降低，部分细胞出现重叠现象。这时压片比较困难，在显微镜下观察可以看到有些细胞出现了细胞核固缩、细胞破碎的现象，如图 1所示。较高浓度的磺胺类药物可引发细胞凋亡，细胞分裂数减少，说明磺胺类药物有抑制作物根尖细胞分裂的作用。这和Srivastava等^[17]用较高浓度的固体垃圾渗滤液处理大麦得到的结果一致。

图 1 磺胺类药物对作物微核的诱导（放大1600倍） Figure 1 Micronuclei of crop root cells induced by sulfonamides

图选项

因不同实验材料监测的结果有很大差异，故较低的微核率是试验成功的关键因素之一^[18]。在正常情况下，本底微核率不应高于10‰^[19]。本研究中作物微核率的本底值都在10‰以内，符合污染检测要求。由表 1可知，与阴性对照组相比，浓度对玉米微核率的影响极显著（P<0.01），兽药种类对微核率的影响亦达到极显著水平（P<0.01）。

由表 1可以看出，5 mg·L^-1的NaN₃可显著诱发玉米的微核效应（P<0.05）。与阴性对照组相比，3种兽药在1~100 mg·L^-1浓度范围内，均可诱发玉米根尖细胞明显的微核效应，其中SD、SMM在50 mg·L^-1时产生的微核率最大，SMZ在100 mg·L^-1时微核率最大。

表 1 3种磺胺类药物诱导不同作物根尖细胞产生的微核率（‰） Table 1 Micronucleus rates in root tip cells of different crops induced by three sulfonamides（‰）

表选项

在实验浓度范围内，玉米根尖细胞微核率随磺胺类药物浓度的升高而增大，至药物浓度50 mg·L^-1时，SD和SMM所诱发的微核率达到最大值，分别为21.86‰和21.52‰，浓度进一步增加时微核率反而下降。这可能是由于随着浓度的升高、毒性的增强，玉米根尖细胞受损，导致细胞周期延长，分生区细胞的分裂减弱，这和易岚等^[20]的研究结果相似。由表 1还可以看出，SMZ组在浓度为5~100 mg·L^-1范围内微核率一直与药物浓度呈线性关系，相关系数为0.917 5，但在浓度为1 mg·L^-1时诱发的微核率（8.14‰）反而大于5 mg·L^-1时的微核率（6.61‰）。这可能是因为低浓度的SMZ还未表现出相应的毒性，并且能在一定程度上促进玉米根尖分生区细胞分裂，这和韦立秀等^[21]用甲醛诱导蚕豆细胞微核所得出的结论相似。 2.1.2 磺胺类药物对小麦根尖细胞微核率的影响

随着药物浓度的增大，小麦根尖细胞微核率明显增加，表明药物毒性逐渐增强。SD、SMM和SMZ组均在100 mg·L^-1时出现最大微核率。与阴性对照相比，浓度对小麦微核率的影响极显著（P<0.01），而兽药种类对微核率的影响不显著（P>0.05）。故对小麦根尖细胞而言，兽药种类的改变对其微核率无明显影响。

SMM和SMZ处理组中，小麦根尖细胞的微核率在浓度为100 mg·L^-1时达到最大值，分别为20.17‰和17.44‰；当浓度升高到200 mg·L^-1时，微核率分别降至18.63‰和16.01‰。由表 1可知，SMM各浓度的小麦根尖细胞微核率均大于SMZ，说明小麦根尖细胞对SMM的敏感度高于SMZ。而SD处理下，小麦细胞的微核率在1~100 mg·L^-1范围内与药物浓度呈线性增长关系，相关系数为0.963，微核率在100 mg·L^-1时达最大值20.27‰，说明小麦根尖细胞在高浓度SD作用下才能诱发较大微核率，小麦根尖细胞对SD的敏感度较弱。 2.1.3 磺胺类药物对蚕豆根尖细胞微核率的影响

由表 1可知，3种兽药在1~100 mg·L^-1浓度范围内均对蚕豆根尖细胞产生明显的毒性作用。SD组在10 mg·L^-1时微核率达到最大值25.94‰，而 SMM、SMZ组在50 mg·L^-1时微核率分别达到最大值23.61‰和20.53‰，说明蚕豆对SD的敏感性高于SMM和SMZ。对蚕豆而言，兽药浓度对微核率的影响极显著（P<0.01），兽药种类对微核率的影响亦极显著（P<0.01）。在同一浓度作用下，SD、SMM、SMZ诱发蚕豆根尖的微核率均明显高于玉米和小麦，在SMM处理下，50 mg·L^-1时蚕豆微核率为23.61‰，玉米和小麦分别为21.52‰和18.22‰，表明同种药物同一浓度作用下，蚕豆根尖细胞受损更严重。这说明蚕豆根尖细胞对磺胺类药物较敏感，且染色体较大，便于观察，更适合作为磺胺类药物污染的指示作物^[22]。 2.1.4 不同作物对磺胺类药物敏感性的比较

微核产生的主要原因是各种具有损伤性的理化因子影响了细胞功能，造成了细胞损伤^[23]。本研究中，磺胺类药物能诱发3种作物根尖细胞微核，表明这类药物可以引起作物根尖细胞DNA 损伤，因而是一种潜在的致突变剂和致癌物质。

由表 1可知，不同种类的磺胺类兽药对同一作物的微核率影响不同，而不同作物对同一兽药的敏感性也不同。SD处理下，蚕豆的微核率高于玉米和小麦。当SD浓度为10 mg·L^-1时，蚕豆的微核率达到最大值35.94‰，玉米的微核率为16.59‰，小麦的微核率为12.87‰。由此可知，在相同浓度SD作用下，3种作物的敏感性为蚕豆>玉米>小麦。SMM组3种作物的微核率随浓度变化情况如表 1所示，50 mg·L^-1时蚕豆和玉米均达到最大值，分别为23.61‰和21.52‰，小麦的微核率为18.22‰，可见蚕豆和玉米对SMM的敏感程度高于小麦。但在同一浓度下，蚕豆根尖细胞的微核率大于玉米，说明3种作物的根尖细胞对SMM的敏感性为蚕豆>玉米>小麦，与SD作用下作物表现的敏感性相同。SMZ处理组中，50 mg·L^-1时蚕豆微核率达到最大值20.53‰，小麦微核率为15.76‰，而玉米随药物浓度升高微核率的增长最为缓慢，为12.77‰。由此得出，3种作物的根尖细胞对SMZ的敏感顺序为蚕豆>小麦>玉米。产生这种差异的原因可能是，同种药物对不同作物根尖细胞的作用机理不同。相同浓度下，蚕豆比玉米、小麦具有更高的微核率，这可能是因为小麦和玉米具有更强的抗氧化能力^[24]。 2.2 3种磺胺类兽药复合对作物根尖细胞微核率的影响

图 2显示，与兽药单一作用相比，在1~50 mg·L^-1浓度范围内，兽药复合作用的微核率较高，说明低浓度的兽药复合毒性高于单一毒性；当浓度升高至50~100 mg·L^-1时，复合作用产生的微核率明显降低，说明兽药的复合在低浓度表现出协同作用，高浓度则表现出拮抗作用。这可能是因为低浓度时细胞分裂比较旺盛，在药物毒性作用下，产生微核的细胞数较多，随着浓度升高，药物毒性作用增大，细胞死亡数量增多，微核率大大减少。方差分析可知，不同种类兽药复合对作物根尖细胞微核率影响显著（P<0.05），复合兽药浓度对作物根尖细胞微核率影响极显著（P<0.01）。

图 2 3种磺胺类兽药复合对3种作物根尖细胞微核率的影响 Figure 2 Micronucleus rates in crop root tip cells induced by compound sulfonamides

图选项

玉米、蚕豆在1 mg·L^-1 SMZ单一处理下表现出的低促作用在SD-SMZ、SMM-SMZ复合时消失，说明低浓度兽药复合不会加快作物细胞的有丝分裂。5~10 mg·L^-1时，SD-SMM复合作用下微核率上升较快，可能是因为较低浓度的复合兽药在尚未抑制细胞分裂的条件下表现出较高的毒性，以致在这个浓度范围内，微核率呈明显上升趋势；当浓度上升至50 mg·L^-1时，微核率达最大值，而当浓度继续增大时微核率开始下降，可能是因为高浓度SD-SMM毒性增强，抑制细胞分裂，使微核量减少；当各复合浓度增至100 mg·L^-1时，与单一作用比较，微核率差别很小，可能是因为此时SMM产生的毒性已足够引起细胞大量死亡，再加入其他兽药对微核率的变化无明显影响。

由图 2可以看出，在3种兽药复合处理下，蚕豆根尖微核率在10 mg·L^-1时即达到最大值，且最大值明显高于玉米和小麦。这说明在复合兽药的处理下，蚕豆仍是最敏感的作物。

SD-SMM复合处理下，3种作物所诱发的微核率均比单一兽药高。蚕豆在10 mg·L^-1达到最大微核率26.13‰，比SD单一处理时高6.9%，比SMM单一处理时高10.7%。玉米和小麦亦表现出相同规律。由此可见，在SD-SMM复合污染作用下，复合毒性增强，具有协同效应。

SD-SMZ复合处理下，玉米、小麦均在100 mg·L^-1时达到最大值，分别为19.67‰和21.53‰，高于单一SD、SMZ处理所得微核率的最大值；小麦根尖微核率的增长幅度高于玉米，说明SD-SMZ复合对小麦的毒性较大。

SMM-SMZ复合在1~100 mg·L^-1范围内，3种作物微核率均随浓度增加而显著升高，且3种作物在各个浓度的微核率高低顺序均为蚕豆>玉米>小麦。浓度高于50 mg·L^-1时，3种作物的微核率逐渐趋于相近，此时SMM-SMZ复合表现出拮抗作用。出现这种现象可能是因为 SMM与SMZ的衍生基团处于苯环上同一位置，结构的相似导致两种兽药的作用机理相似。在染毒过程中，2种兽药在作物细胞染色体上的结合位点可能相同，故出现竞争机制。在低浓度（1~10 mg·L^-1）作用下，结合位点尚未饱和，两种兽药分子均可与位点结合，对作物产生毒害加剧，相同浓度下SMM-SMZ复合比单一作用产生的微核率高，并在10 mg·L^-1时达到最大值。随着浓度继续升高至50~100 mg·L^-1，细胞DNA结合位点逐渐饱和，两种兽药分子因不能与DNA有效结合而无法产生更强的毒性作用。因此，SMM-SMZ复合高浓度下，3种作物的微核率下降并趋于一致。 3 结论

（1）3种磺胺类药物对作物细胞均具有遗传毒性，但不同的作物对同一药物的敏感性不同。SD和SMM的处理下，3种作物的敏感性顺序为蚕豆>玉米>小麦；SMZ处理下，3种作物的敏感性顺序为蚕豆>小麦>玉米。

（2）复合污染条件下，单一兽药对作物的低促作用会消失，且低浓度磺胺类兽药的复合毒性高于单一毒性。

（3）兽药的复合在低浓度表现出协同作用，高浓度则表现出拮抗作用，这可能与兽药分子的结构及其与DNA分子的结合位点有关。