2. 农业农村部环境保护科研监测所农业环境污染修复研究中心, 天津 300191
2. Research Centre for Remediation of Agro-Environmental Pollution, Agro-Environmental Protection Institute, Ministry of Agriculture and Rural Affairs, Tianjin 300191, China
重金属镉(Cd)因其污染性强、污染范围广而受到广泛关注。Cd在植物体内积累到一定程度后会抑制光合作用和呼吸作用,甚至导致生物量下降或死亡[1]。水稻是Cd积累能力最强的粮食作物,土壤中的Cd可以通过根系吸收转运到叶片和穗轴中,大气沉降中的Cd也可以通过叶片进入植物体内,在籽粒灌浆期间转运到稻米中[2-3]。稻米中的Cd通过食物链进入人体,危害人体健康[4]。
锌(Zn)是许多蛋白质和酶的重要组成部分,对植物的生长发育起着至关重要的作用[5-6]。研究表明,Zn与Cd会竞争相同载体蛋白进行跨膜运输[7]。加Zn可使水稻、烟草、小麦对Cd的吸收减弱,说明Zn对植物吸收Cd可能存在拮抗作用[8]。施Zn能促进小麦的光合作用,使POD酶活性提高,质膜稳定性增强,还降低了小麦体内脯氨酸的含量,进而加强了小麦对Cd胁迫的抵御能力[9]。此外,Zn可以通过缓解DNA损伤、调控脯氨酸及多胺代谢来降低Cd对植物的毒害[10]。土壤中Zn和Cd之间也存在交互作用。土壤中添加Cd会使Zn的吸附量下降、吸附速率减慢[11]。Zn能与吸附在土壤胶体上的Zn进行离子交换,降低土壤中Zn的有效性,增加土壤中可溶性Zn的含量。随着土壤中Zn浓度的增加,Zn与Cd在配合物上发生显著的竞争吸附,使得土壤中有效态Cd显著增加[12]。
硅(Si)是土壤中第二大元素,植物可以在茎叶中积累丰富的Si。Si能提高植物生长发育过程中抵抗各种生物和非生物胁迫的能力[13]。水稻是一种高积累Si的植物[14]。Si在质外体与Cd形成沉淀是缓解植物体内重金属毒害的主要原因[15]。Si和Cd在一些代谢不活跃的组织尤其是中柱鞘、木质部和韧皮部细胞壁内皮层形成的Si-Cd沉淀也可以抑制Cd的吸收和转运[16]。Si还能将更多的Cd分隔在液泡中或固定在节间[17-18],从而减少Cd在水稻中的移动。这些结果表明,施加Si能通过影响Cd在植物体内的吸收转运来减缓Cd的毒害作用。
虽然一定浓度的Si和Zn都能抑制水稻对Cd的吸收转运,但未见Si-Zn互作方式与水稻Cd吸收转运关系的研究报道。本文以水稻幼苗为材料,通过在根际环境中施加不同浓度的巯基硅和Zn,对水稻幼苗Cd的亚细胞分布特征、必需元素、可溶性蛋白进行研究,探讨了根际环境中添加Si和Zn离子抑制水稻Cd吸收转运的互作机理,从而为降Cd复合肥料的研发提供参考依据。
1 材料与方法以湘早籼24(X24)为供试材料,选用饱满均一的水稻种子,在300 mL 5%的NaClO中浸泡30 min,用去离子水反复冲洗以去除残余的NaClO。水稻种子冲洗干净后均匀放入装有少量水的育苗盘内,放入28 ℃恒温培养箱黑暗培养72 h后移入人工气候室。待水稻长到两叶一心时,选取均一的水稻幼苗移到装有8 L 1/10Hoagland营养液的塑料盆(35 cm×25 cm×12 cm)中进行培养。塑料盆上盖有带小圆孔的硬塑料板,将幼苗用海绵固定在小圆孔内。待水稻长到三叶一心时挑选长势一致的幼苗,在去离子水中饥饿1 d,然后放置于以1/10 Hoagland营养液为基础的不同处理液中处理7 d。水培试验整个过程在人工气候室中进行,昼夜时间为16 h/8 h,昼夜温度为25 ℃/20 ℃,白天光照为105 μmol·m-2·s-1、相对湿度为60%[19]。
1.1 培养与处理方法设置处理液镉(CdCl2)浓度2.7 μmol·L-1,巯基硅浓度为0.05(Si1)、0.1(Si2) mmol·L-1,Zn浓度(ZnSO4·7H2O)分别为0、0.2 mmol·L-1。巯基硅来自深圳百乐宝生物农业科技有限公司,硅含量≥30%,溶解度为75%,明显优于硅酸钠(NaSiO3·H2O)的溶解度36.1%。处理液用HCl和NaOH调节pH至5.5~6。每个处理3次重复。
1.2 样品采集与处理将处理好的水稻幼苗根系用5 mmol·L-1的CaCl2浸泡10 min[20],以吸附去除根系表面的Cd2+,之后用去离子水冲洗干净,用吸水纸吸干表面水分,用剪刀将地上部与根系分开。一部分放入信封,75 ℃恒温烘干,用于全Cd测定;另一部分,分别称取根系和地上部鲜样1 g,用锡纸包裹后放入液氮中冷冻,之后置于-80 ℃储存,用于亚细胞测定。
1.3 Cd、Si含量的测定用剪刀将恒重的样品剪碎,称重后置于消煮管中,加入7 mL HNO3过夜,用消解仪ED54于110 ℃加热2.5 h,冷却后加入1 mL的H2O2,盖盖加热1.5 h,170 ℃开盖赶酸至0.5 mL左右,定容至25 mL,用原子吸收仪(AAS,ZEEnit70d0,Analytikjena,德国)测定样品中Cd含量[21]。
分别吸取Si标液0、0.125、0.25、0.5、1.25、2.5、5 mL定容至50 mL,Si含量分别为0、2.5、5.0、10、25、40、50 μg·mL-1。向10 mL离心管中依次加入2.7 mL去离子水、200 μL Si标液、1.5 mL 0.26 mol·L-1 HCl、200 μL 10%钼酸铵,静止5 min后再加入200 μL 20%酒石酸、200 μL 2%抗坏血酸摇匀静止25 min。样品采用高压灭菌法处理后依次加入药品,600 nm处比色[22]。
1.4 亚细胞组分的测定将冷冻的水稻幼苗放在含有50 mol·L-1 Hanks平衡盐溶液(HEPES)、500 mol·L-1蔗糖溶液、1 mol·L-1二流苏糖醇(DDT)、5 mmol·L-1抗坏血酸和1%(W/V)聚乙烯吡咯烷酮(PVPP)的提取缓冲液中匀浆,并用NaOH调pH至7.5。匀浆液通过尼龙布(100目)过滤,用缓冲液冲洗后100 g离心5 min,沉淀为细胞壁组分(F1)。上清液以10 000 g离心30 min,沉淀为细胞器组分(F2),上清液为胞液组分(F3)。所有步骤均在4 ℃下进行[23]。各组分烘干后按照1.3的步骤测定Cd含量。
1.5 可溶性蛋白的测定称取45.6 g K2HPO4·3H2O和27.2 g KH2PO4放入1 L容量瓶中摇匀,标为A液和B液。将153.8 mL A液和96.2 mL B液加去离子水定容至1 L,配制成pH为7的50 mmol·L-1磷酸缓冲液。将227 mL A液和23 mL B液用去离子水定容至1 L,配制成pH为7.8的0.05 mmol·L-1磷酸缓冲液。称取0.3 g EDTA-Na2和5 g聚乙烯吡咯-K30溶于1 L pH为7的磷酸缓冲液,配制成粗酶提取液。
将新鲜水稻幼苗用去离子水清洗干净,然后各称取0.5 g左右。用液氮研磨,加入8 mL提取液,4 ℃ 10 000 r·min-1离心20 min,取上清液待测。
1.6 数据处理与计算
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Cd在水稻根系和地上部亚细胞组分中的分配比率(%)为各器官亚细胞组分中的Cd含量占各器官Cd总量的百分比。
采用Excel 2007、SPSS 11.5进行数据统计分析和作图。
2 结果与分析 2.1 Si-Zn互作对水稻幼苗Cd和Zn含量的影响由图 1所示,施加Si和Zn对水稻根系和地上部Cd含量有显著影响。施加0.05 mmol·L-1和0.1 mmol·L-1巯基硅可使根系Cd积累量下降5.4%~34.6%(图 1A)。地上部Cd积累量分别下降3.5%和51.8%(图 1B)。同时添加0.2 mmol·L-1 Zn和0.05 mmol·L-1 Si或0.1 mmol·L-1 Si使水稻幼苗根系中的Cd含量分别下降27.4%和68.9%,使地上部的Cd含量分别下降78.0%和88.0%。Si和Zn共存时对Cd的抑制效应明显大于单独施加巯基硅的抑制效应,对地上部Cd积累量的抑制效应大于对根系Cd的抑制效应。
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不同小写字母代表处理间差异达到0.05显著水平 Different letters indicate significant difference between treatments at P < 0.05 level Cd: 2.7 μmol·L-1 Cd, Si1: 0.05 mmol·L-1 Si, Si2: 0.1 mmol·L-1 Si, Si1+Zn: 0.05 mmol·L-1 Si+0.2 mmol·L-1 Zn, Si2+Zn: 0.1 mmol·L-1 Si+0.2 mmol·L-1 Zn.下同。The same below 图 1 Si、Zn处理对Cd胁迫中根系和地上部Cd及Zn含量的影响 Figure 1 Effects of Si and Zn treatments on the concentrations of root Cd, shoot Cd, root Zn and shoot Zn under Cd stress |
单独添加巯基硅对水稻幼苗中的Zn含量没有显著影响。施加0.2 mmol·L-1 Zn后,水稻幼苗根的Zn含量明显高于地上部,锌含量随着添加Zn浓度的增加而大幅升高。和对照相比,Si1+Zn和Si2+Zn处理使水稻根系中的Zn含量分别提高了19倍和14倍(图 1C),使地上部中的Zn含量分别提高了10倍和6倍(图 1D)。
2.2 Si-Zn互作对水稻幼苗亚细胞组分中Cd含量及分配比例的影响水稻根系细胞壁、细胞器和胞液组分中的Cd含量有显著差异。Cd在幼苗根系的亚细胞分布表现为细胞壁>胞液>细胞器(图 2A),在地上部的亚细胞分布表现分别为细胞壁≈胞液≫细胞器(图 2B)。施加Si和Zn显著降低了水稻幼苗亚细胞各组分的Cd含量。其中细胞壁和胞液中的Cd含量下降幅度较大。
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图 2 Si、Zn处理对Cd胁迫下幼苗根系和地上部亚细胞中Cd含量的影响 Figure 2 Effects of Si and Zn supply on Cd concentrations in subcellular fraction of roots and shoots in rice seedlings under Cd stress |
如图 2A所示,和Cd处理相比,Cd+Si1处理对根系细胞壁组分中的Cd含量无显著影响,Cd+Si2处理使根系细胞壁组分中的Cd下降了43.8%,但这2种处理使胞液组分中的Cd含量分别下降了38.7%和53.0%。Zn-Si互作显著抑制Cd进入胞液组分的过程。Cd+Si1+Zn和Cd+Si2+Zn处理使细胞壁组分中的Cd含量分别下降了39.2%和79.8%,使胞液组分中的Cd含量分别下降了43.9%和63.7%。Zn-Si互作显著抑制Cd进入细胞壁和胞液组分的过程。如图 2B所示,Cd+Si1和Cd+Si2处理使地上部细胞壁组分中的Cd含量分别降低了18.3%和56.4%,胞液组分中的Cd含量分别下降了14.8%和61.7%。Cd+Si1+Zn和Cd+ Si2+Zn处理使细胞壁中的Cd分别下降了87.2%和91.4%,使胞液中的Cd含量分别下降了95.3%和95.4%。Si-Zn互作对根系细胞壁中Cd积累的抑制作用较弱,对胞液中Cd的积累抑制作用较强。
在根际环境中添加Si和Zn对根系和地上部亚细胞组分中的Cd分配也产生了显著影响。随着Si浓度的增加,根系细胞壁中的Cd分配比例显著下降,和无Si的Cd处理相比,Cd+Si2和Cd+Si2+Zn处理使根系细胞壁中的Cd分配比例分别下降了10%和20.3% (图 3A)。而地上部Cd分配比例的下降主要表现在细胞液组分中,Cd+Si2、Cd+Si1+Zn和Cd+Si2+Zn处理使地上部细胞液中的Cd分配比例分别下降了24.4%、53.4%和51.9% (图 3B)。
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图 3 Si、Zn处理对幼苗根系和地上部亚细胞组分中Cd分配比例的影响 Figure 3 Effects of Si and Zn on Cd distribution in subcellular fractions of roots and shoots in rice seedlings under Cd stress |
在Cd胁迫环境中,增加0.05~0.1 mmol·L-1的巯基硅,根系中的Ca、Fe含量都显著下降,Mn的含量显著增加(表 1)。和单施Si相比,同时添加Si和Zn时,根系中的K和Zn含量显著增加,而Ca和Mn含量则显著下降。Si-Zn共存时对水稻地上部的K、Fe和Zn含量有明显的促进作用。从转移因子来看,与单施Si相比,Si-Zn互作促进根系中Ca、Fe向地上部的转运,对K、Mn的转运有一定的抑制作用(表 2)。
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表 1 Si和Zn对水稻幼苗根系和地上部必需元素含量的影响(mg·kg-1 DW) Table 1 Effects of Si and Zn on essential elements in rice seedlings under Cd stress(mg·kg-1 DW) |
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表 2 Si和Zn对水稻幼苗必需元素转移因子的影响 Table 2 Effects of Si and Zn on the translocation factors of essential elements in rice seedlings under Cd stress |
与单独的Cd胁迫处理相比,添加0.05 mmol·L-1和0.1 mmol·L-1的巯基硅使根系中的可溶性蛋白含量分别上升14%和44%,Si和Zn共存时,根系中的可溶性蛋白含量可提高20%~45%(图 4A)。但地上部的可溶性蛋白含量在处理间没有显著差异(图 4B)。
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图 4 Si、Zn处理对水稻幼苗根系和地上部可溶性蛋白含量的影响 Figure 4 Effects of Si and Zn on soluble protein of roots and shoots in rice seedlings under Cd stress |
Si是促进水稻生长发育、提高水稻抗逆能力的有益元素,Zn则是水稻生长发育所必需的微量元素,参与多种生命活动过程。增加根际环境中的Si或Zn离子浓度能有效缓解Cd对根系的生理毒害,促进根系和地上部的生长发育[8, 25-28]。本研究发现,在含2.7 μmol·L-1 Cd的营养液中添加低浓度的Si (0.05 mmol·L-1)对水稻根系中的Cd积累量几乎没有影响,当巯基硅的浓度增加到0.1 mmol·L-1时,水稻根系和地上部的Cd含量才会显著下降。但当Si和0.2 mmol·L-1 Zn共存时,低浓度的巯基硅也能显著抑制水稻对Cd的吸收和转运。
植物在长期的进化过程中形成了多元的解毒机制,在重金属污染环境中,水稻能将大量的Cd固定在根系中[29],只有少部分Cd通过维管束组织向地上部转运。Si既能促进细胞壁的发育以及Cd与细胞壁中半纤维素的结合[30],又能和Cd形成难移动的化合物沉淀在细胞壁或液泡中[31],还能通过降低蒸腾作用抑制Cd从根系向地上部的转运[32]。Zn是多种蛋白质的主要辅酶,对重金属的跨膜运输和进出韧皮部的过程都有重要调控作用[33-34]。在本试验中,Si和Zn共存时对地上部的K、Fe和Zn含量都有显著的促进作用,必需元素吸收转运效率的提高必然会抑制相关通道对Cd的转运,因而能使根系胞液组分中的Cd含量下降43.9%以上。随着根系中可移动的Cd数量大幅度减少,地上部的Cd总量也显著下降。Si和Zn互补作用使得低浓度的Si也能对Cd在水稻体内的转运产生显著的抑制效果。
植物体内的可溶性蛋白质和可溶性糖作为渗透保护物质,有利于植物在逆境胁迫下维持细胞的结构和功能[35]。Cd胁迫通常会抑制可溶性蛋白的合成,降低酶的生物活性[11]。而Si和Zn对维持细胞内大量元素(如P、K、S)和微量元素(如Fe、Cu、Mn、Zn等)的离子平衡发挥着重要作用[36-38]。这种离子动态平衡的保持与可溶性蛋白的代谢有着密切的关系。环境中增加Si浓度不仅能显著提高Lsi1基因的表达水平,同时还调控OsHMA3、Nramp5等许多与离子转运、金属硫蛋白合成等有关的基因[30, 32],因而对蛋白质代谢产生重要影响。当Si和Zn共存时,水稻幼苗根部的可溶性蛋白含量显著提升,说明Cd对根系的生理伤害因Si和Zn的存在而修复。由于地上部胞液组分中的Cd含量仅相当于根系胞液中的十分之一,对细胞产生的生理毒害甚微,所以地上部的可溶性蛋白含量在处理间没有表现出显著差异。
4 结论(1) 在含Cd 2.7 μmol·L-1的营养液中添加0.1 mmol·L-1的巯基硅能使水稻幼苗根系和地上部的Cd含量分别下降34.7%和51.8%。
(2) Si和Zn共存时对Cd的抑制作用更加明显,同时添加0.2 mmol·L-1 Zn和0.05 mmol·L-1的巯基硅,能使水稻幼苗根系和地上部的Cd含量分别下降27.4%和78.0%。
(3) 同时添加Si和Zn能促进根系对K、Ca、Fe、Zn等元素的吸收以及向地上部的转运,并能显著提高根系中可溶性蛋白的含量。
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