氟磺胺草醚是一类常用于大豆田除草的高效茎叶类除草剂，但其在土壤中半衰期较长，为100~240 d^[1]。近年来的研究发现，氟磺胺草醚田间实际用量为登记用量的3~4倍^[2]，80%~90%的除草剂最终进入土壤，长残效除草剂（氟磺胺草醚）在农田土壤中长期累积，导致杂草抗性日趋加重，作物产量逐渐下降，后茬作物立苗受到显著影响，土壤微生物多样性和活性遭到破坏，生物固氮受到影响^[3-4]。因此，及时有效地消除氟磺胺草醚对豆科作物生长及固氮微生物的不利影响是农业生产过程中亟待解决的关键问题。

近年来，越来越多的研究发现，根瘤菌在不同环境长期的自然选择过程中，形成了降解有毒物质的关键酶系。据报道，从不同污染土壤中分离获得的根瘤菌能够在离体条件下降解甲苯、莠去津、多环芳烃、茅草枯、草甘膦等有机污染物^[5-6]。根瘤菌能够增强有机污染物的降解可能是因为：根瘤菌定殖在植物根部，生存环境较好，可以增加植物根系分泌物，促进土壤微生物数量及土壤酶活性，改善土壤微生物群落结构，形成植物-微生物修复体系，增强微生物的降解作用^[7]；微生物可以通过变异产生新的菌种，形成新的降解酶系统，降解相应的人工合成的有机化合物^[8]。因此，筛选高效降解氟磺胺草醚根瘤菌应用于长期施用该除草剂的土壤是缓解其对农田系统生物固氮及豆科作物生长所造成负面影响的一种有效手段。

本项目组筛选出了一批具有降解氟磺胺草醚能力的固氮根瘤菌，其中菌株Sinorhizobium sp. W16在预试验中对缓解氟磺胺草醚药害以及促进大豆苗期生长表现出了良好的效果，但其对大豆生长过程中生物固氮的影响还不清楚。生物固氮占全球固氮总量的70%，其包括自生固氮、共生固氮以及联合固氮，生物固氮是大豆的主要氮素来源^[9]。目前，氟磺胺草醚降解菌对作物生长影响的研究较多，但对豆科植物-根瘤菌共生固氮及土壤固氮微生物的影响及相关机制仍不明确^[10]。本项目组通过盆栽试验，研究了氟磺胺草醚及其降解菌Sinorhizobium sp. W16对大豆生长、生物固氮能力、根瘤菌干质量与根瘤固氮酶活性、根际固氮功能基因丰度及氮转化相关功能基因丰度的影响，旨在为大豆种植中合理施用除草剂以及修复除草剂污染土壤提供科学依据。

1 材料与方法 1.1 试验材料

试验土壤采自江苏省常州市（119°57′ 05″ E，31° 56′ 49″ N）0~20 cm农田耕层土壤，农田5 a内未曾使用过氟磺胺草醚。试验所用土壤为长江中下游典型大豆种植区域土壤——黄棕壤，土壤理化性质为：有机质4.03 g·kg^-1、全氮0.370 g·kg^-1、碱解氮17.33 mg·kg^-1、全磷0.552 g·kg^-1、有机磷0.040 g·kg^-1、pH 7.29。土样在室温下自然风干，磨碎，过2 mm筛，供盆栽试验使用。

试验所用除草剂为25%氟磺胺草醚水剂，购自山东天润化工有限公司。所用大豆品种为苏C1008，由江苏省农业科学院经济作物研究所提供。

试验所用降解菌株Sinorhizobium sp. W16由江苏省农业科学院农业资源与环境研究所农产品产地环境研究中心筛选提供。以50 mg·kg^-1氟磺胺草醚为唯一碳源，5%的接种量（质量比）进行7 d液体降解试验，降解菌株W16对氟磺胺草醚的降解率在35%左右，通过测序发现菌株W16为中华根瘤菌Sinorhizobium sp.。

试验用盆为硬质塑料花盆，底部留有孔径以供排水，盆的规格为长24 cm×宽24 cm×高19 cm。

1.2 试验设计

试验于2020年5月在江苏省农业科学院温室大棚（118°52′ 13.65″ E，32°02′ 9.07″ N）进行，光照为自然光照。在每个花盆中装入4.5 kg风干土壤，盆内播种大豆种子8~10粒，浇透水，然后采用称质量的方法将土壤含水率维持在田间持水量（60%）。待长出真叶后每个花盆保留4株长势一致的幼苗。

试验采用完全随机设计，共7个处理，包括不接菌组（F）、接菌组（FJ）和对照组（CK）。其中，不接菌组和接菌组均设置3个氟磺胺草醚施用剂量（以有效成分计），分别为大田推荐剂量（F1和FJ1，225 g·hm^-2）、2倍大田推荐剂量（F2和FJ2，450 g·hm^-2）和5倍大田推荐剂量（F3和FJ3，1 125 g·hm^-2）。对照组不施用氟磺胺草醚且不接菌。每个处理设置4个重复，每个时间点采集4/5个重复样本，共计140盆。

在播种后第21 d（V2苗期）时施用除草剂，使用配有氟磺胺草醚试剂的真空按压分装瓶（30 mL）对每盆植株进行茎叶喷施。播种后第28 d时，在接菌组大豆根部滴加20 mL降解菌悬液。

加入降解菌悬液后分别在始花期（10 d，R1）、初荚期（20 d，R2）、盛荚期（30 d，R4）、鼓粒期（40 d，R6）和成熟期（50 d，R7）进行样品的破坏性采样。采集土壤样品时首先进行盆土分离，将非根际土壤混匀后，取1 kg左右用于土壤铵态氮和土壤硝态氮的测定，并将采集的一部分新鲜土壤保存于-20℃冰箱用于土壤脲酶的测定。去除根系附着土壤，然后用毛刷轻轻刷取大豆根部新鲜根际土壤并保存于-80 ℃冰箱，用于土壤DNA的提取以及相关功能基因的测定。同时采集作物地下部样品，轻轻洗去根系附着土壤，用吸水纸擦干，用于根部生物量以及根瘤固氮酶活性的测定，地上部样品保存于-80 ℃冰箱用于植物全氮的测定。

1.3 植物与土壤理化指标的测定

采用凯氏定氮法^[11]测定植株全氮含量，采用乙炔还原法^[12]测定大豆根瘤固氮酶活性；使用索莱宝试剂盒（购自北京索莱宝科技有限公司）测定土壤脲酶活性；使用天平称取作物单株质量、籽粒百粒质量、根干质量、根瘤干质量。采用FastDNA Spin试剂盒（MP Biomedical，Carlsbad，USA）提取土壤样品的DNA，根据LI等^[13]和XU等^[14]已修正的程序，采用实时荧光定量扩增技术（qPCR）测定基因拷贝数，扩增引物及扩增条件详见表 1。

土壤氟磺胺草醚提取方法：称取2 g冷冻干燥的新鲜土样于50 mL离心管中，加入5 mL去离子水和5 mL乙腈，涡旋1 min，浸泡2 h后，振荡4 h，然后将离心管置于离心机中8 000 r·min^-1离心5 min，取5 mL上清液转移至装有1 g NaCl的10 mL离心管中，振荡20 min后，静置15 min，取上层乙腈相过0.22 μm有机相滤膜后上机测试。液相色谱测定条件：分离柱为ZORBAX SB-C 184.6 mm×150 mm不锈钢柱，流动相为乙腈/水（0.5%磷酸）=65/35，波长290 nm，柱温30 ℃，流速1 mL·min^-1，进样量20 μL。

1.4 数据处理

采用Excel 2012和Adobe Illustrator 2020进行数据处理和制图。采用SPSS 22.0进行单因素、多因素方差分析和皮尔逊相关分析，处理间多重比较采用最小显著性差异（LSD）法。

2 结果与分析 2.1 氟磺胺草醚及其降解菌对大豆生长和氮累积的影响

由图 1A可知，大豆干质量（地上部生物量）随着氟磺胺草醚施用量的增加呈现降低趋势，2倍和5倍大田推荐剂量时的，大豆干质量较CK显著下降7.42%和11.12%（P < 0.05）；接菌后，大豆植株干质量较不接菌提高3.16%~5.44%。氟磺胺草醚的施用显著降低了大豆籽粒百粒质量（鲜质量），且随着施用剂量的增加，影响加剧（图 1B）。5倍大田推荐剂量显著降低籽粒百粒质量达22.23%。相较于不接菌，接菌处理使得大豆籽粒百粒质量增加9.30%~11.94%。施用不同剂量氟磺胺草醚均显著降低大豆根干质量（图 1C），降低率最高达43.51%。接种菌株W16能够一定程度缓解高剂量除草剂对大豆根系的药害作用，相较于不接菌，接菌后根干质量增加1.57%~12.73%。

随氟磺胺草醚施用量的增加，大豆对氮素的累积呈现先升高后降低的趋势（图 1D）。接种菌株W16可以显著提高大豆全氮含量，相较于未接菌处理，接菌可增加大豆全氮含量15.84%~24.93%。

2.2 氟磺胺草醚及其降解菌对大豆根瘤和根瘤固氮酶活性的影响

由图 2A可知，氟磺胺草醚的施用降低了根瘤干质量，且随着施用剂量的增加而加剧，2倍大田推荐剂量显著降低大豆根瘤干质量，5倍大田推荐剂量时的抑制率达到最高，为26.47%。接菌后，根瘤干质量增加1.52%~11.01%。

总体上大豆根瘤固氮酶活性呈现先上升后下降的趋势（图 2B），其中盛荚期R4时根瘤固氮酶活性最高。这可能是与大豆生长习性有关，在鼓粒期R6前，大豆生长急需氮素供应，因此大豆根瘤固氮酶活性逐渐升高，以获取充足的氮素供应满足生长需求。氟磺胺草醚的施用在大豆各个时期均抑制了根瘤固氮酶活性，大田推荐量下的抑制率可达38.37%（盛荚期R4），2倍田间推荐量下的抑制率可达52.23%（始花期R1）、5倍田间推荐量下的抑制率可达91.07%（始花期R1）。接菌处理能够显著缓解中、低剂量氟磺胺草醚对根瘤固氮酶活性的抑制，其中在30 d（盛荚期R4）时，接种W16降解菌可使1倍和2倍田间推荐量下根瘤固氮酶活性恢复至与对照相近水平。

2.3 氟磺胺草醚及其降解菌对大豆根际土壤氮循环功能基因丰度和土壤氮素转化的影响

由图 3A可知，大豆根际土壤nifH基因丰度随着时间的增加呈上升趋势，这可能是受到W16菌株及大豆生长的持续影响。但与未施用除草剂的对照相比，施用氟磺胺草醚降低了根际土壤nifH基因丰度。接种W16降解菌可以显著增加施用氟磺胺草醚根际土壤nifH基因丰度（P < 0.05），使根际土壤nifH基因丰度增加31.86%~146.87%，使根际土壤nifH基因丰度（成熟期R7）恢复甚至高于未施用除草剂的对照水平。

土壤氨氧化古菌AOA基因丰度（图 3B）随大豆生长呈先上升后下降的趋势，土壤氨氧化细菌AOB基因丰度（图 3C）随大豆生长呈下降趋势。与未施用除草剂相比，施用高浓度氟磺胺草醚显著降低大豆各生长时期根际土壤AOA基因丰度（P < 0.05），根际土壤AOB基因丰度在大豆始花期R1受氟磺胺草醚影响较小，但在盛荚期R4和成熟期R7时受施用高浓度氟磺胺草醚影响而显著增加。接种W16降解菌提高了根际土壤AOA和AOB的基因丰度，最高分别达未接菌根际土壤的1.31倍和2.05倍。

与未施用除草剂的对照相比，氟磺胺草醚的施用在大豆不同生长时期整体表现为田间推荐量处理显著刺激了土壤脲酶活性，而2倍和5倍田间推荐量处理显著抑制土壤脲酶活性（图 3D）。相较于未接菌，接种W16降解菌仅在成熟期R7时，使土壤脲酶活性增加了27.62%。

由图 4A可知，在培养期内，土壤铵态氮含量呈先上升后下降的趋势，与未施用除草剂的对照相比，氟磺胺草醚的施用使土壤中铵态氮含量降低了9.46%~19.83%。相较于未接菌，接种W16降解菌使土壤中铵态氮含量增加了5.34%~6.21%。

土壤中硝态氮含量随着大豆的吸收作用而不断下降（图 4B）。与未施用除草剂的对照相比，氟磺胺草醚的施用在始花期R1、鼓粒期R6和成熟期R7均显著（P < 0.05）降低了土壤硝态氮含量。相较于未接菌，接种W16降解菌促进了大豆-根际系统中生物固氮和土壤硝化作用，增加了土壤中有效氮素的供应。

2.4 Sinorhizobium sp. W16菌液处理后土壤氟磺胺草醚降解动态

由图 5可知，施用不同浓度的氟磺胺草醚后，其残留量均随时间推移呈显著下降趋势，但高剂量氟磺胺草醚残留量均显著高于低剂量。接菌处理组氟磺胺草醚的残留量均显著低于未接菌组（P < 0.05）：未接菌组氟磺胺草醚最终降解率为71.32%~75.37%；而接菌组氟磺胺草醚降解率提升了8.76个百分点（大田推荐剂量）、14.05个百分点（2倍大田推荐剂量）、10.03个百分点（5倍大田推荐剂量）。

3 讨论 3.1 Sinorhizobium sp. W16降解菌对氟磺胺草醚残留及大豆生长的影响

目前，已有研究证实降解菌不仅可以应用于土壤的修复，还可以缓解其对植物的毒害作用，恢复甚至促进植物生长^[18-19]。本研究中，施用氟磺胺草醚后，大豆根系受到氟磺胺草醚药害，生物量及产量显著下降。Sinorhizobium sp. W16降解菌的接种不仅有效地降低了土壤氟磺胺草醚残留量，而且提高了大豆籽粒百粒质量、根生物量、根瘤生物量，较好地恢复了大豆植株的生长，缓解了氟磺胺草醚对豆科作物生长所造成的负面影响。这与YANG等^[10]从氟磺胺草醚污染土壤中分离的多萨假单胞菌Pseudomonas mendocina的生物效应接近，该菌不仅具有良好的氟磺胺草醚降解能力，同时能促进玉米和高粱的生长。郭静等^[20]也发现接入氟磺胺草醚降解菌可以较好地恢复玉米的各项生长和生理指标。接种降解菌能够较好地恢复植物生长，一方面，是由于降解菌可有效降解土壤中有机污染物，降低其残留量。氟磺胺草醚在土壤中的自然降解率为40.85%~50.55%^[21]。本研究中所使用的菌株W16为中华根瘤菌（Sinorhizobium sp.），其能够以氟磺胺草醚作为唯一生长碳源，氟磺胺草醚最终降解率达81.97%，与对照相比，降解率提高8.76~14.05个百分点，较好缓解了氟磺胺草醚对大豆的持续药害。FENG等^[22]发现好氧细菌Pseudomonas zeshuii BY-1通过脱卤（氯、氟）、脱硫及乙酰化的过程对氟磺胺草醚进行脱毒降解。本研究中Sinorhizobium sp. W16对氟磺胺草醚的降解机理需要后续进一步研究。另一方面，氮素是大豆生长发育和产量形成的主要元素，接种Sinorhizobium sp. W16降解菌显著刺激大豆根瘤固氮酶活性、土壤脲酶活性，改变氟磺胺草醚对原有根际土壤氮循环功能微生物区系的影响，增加了根际土壤nifH基因丰度31.86%~146.87%，提高了根际土壤AOA和AOB的基因丰度，加速了土壤中有机氮的水解，促进土壤中固氮作用和硝化作用，增加土壤对大豆的速效氮供应。

3.2 氟磺胺草醚及其降解菌对根际土壤固氮的影响

目前，大量研究已表明除草剂对土壤固氮潜力具有较大的影响^[23-24]。本研究中氟磺胺草醚的施用显著降低了根际土壤nifH基因丰度，弱化了土壤固氮潜力。EBERBACH等^[25]认为除草剂主要是通过影响土壤细菌数量进而影响固氮系统。目前已发现氟磺胺草醚、甲氨磷、西玛津等除草剂的添加显著减少土壤细菌总量以及土壤好氧固氮微生物数量，使土壤nifH基因丰度显著下降，从而弱化土壤微生物固氮能力^[26-28]。KOLE等^[29]则发现除草剂氯乙氟灵、二甲戊乐灵的施用显著降低了花生田间土壤细菌总量及好氧非共生固氮菌数量，导致土壤非共生微生物固氮潜力下降。而根瘤菌的存在有利于土壤固氮微生物的生存，增加生物固氮潜力。前人研究发现，在未受任何污染的大豆土壤上接种根瘤菌后土壤中自由固氮细菌（寡养细菌）数量增加，土壤nifH固氮菌的基因丰度提高^[30-31]。本研究中菌株Sinorhizobium sp. W16的接种较好地缓解了氟磺胺草醚对大豆-根际系统中土壤固氮微生物的限制，使根际土壤nifH基因丰度恢复至未施用氟磺胺草醚的对照水平，增强了微生物固氮潜力。大豆根瘤固氮酶活性是衡量大豆固氮能力的一个重要指标^[32]。本研究中450 g·hm^-2和1 125 g·hm^-2氟磺胺草醚的施用显著抑制了根瘤生物量和根瘤固氮酶活性，导致大豆-根瘤菌共生固氮受限，但接种Sinorhizobium sp. W16后显著缓解了氟磺胺草醚对大豆根瘤固氮酶活性的抑制，在盛荚期R4时可恢复至与对照相近水平，提升了大豆共生固氮潜力。MOORMAN等^[33]认为根瘤固氮酶活性受限主要是由于除草剂抑制了作物的光合作用以及根系的生长。除草剂的施用又会导致根瘤中同化产物供应不足、根瘤血红蛋白下降，从而降低根瘤固氮酶活性^[34-35]。

3.3 氟磺胺草醚及其降解菌对土壤及大豆氮素累积的影响

本研究发现与未施用除草剂相比，氟磺胺草醚的施用限制了土壤有效氮素的累积，降低了土壤铵态氮和硝态氮的含量。在培养期内，土壤铵态氮含量呈先上升后下降的趋势，这可能是由于在鼓粒期R6前，土壤nifH基因丰度的增加以及大豆根瘤固氮酶活性和土壤脲酶活性受到刺激，增强生物固氮潜力，增加尿素水解，提高土壤中有效氮素的供应，而在生长后期大豆对氮素需求降低，土壤硝化作用开始增强。土壤中硝态氮含量随大豆生物量增加而不断下降，这可能是由于一部分土壤硝态氮被大豆吸收利用。而接种Sinorhizobium sp. W16后土壤脲酶活性、土壤AOA和AOB基因丰度显著增加，从而提升了土壤中铵态氮与硝态氮含量，增加土壤有效氮素的累积。这与GORICA等^[31]接种根瘤菌及共生固氮细菌后土壤铵态氮和硝态氮含量增加结果一致。与FENG等^[36]在华南低磷酸土壤上接种根瘤菌提升土壤氮素状况的结果相近。

大豆植株氮素积累是产量形成的基础，土壤中氮素的变化又直接影响着大豆氮素累积量。氟磺胺草醚一定程度上限制了大豆-根际系统的生物固氮，导致大豆全氮含量下降。而接种Sinorhizobium sp. W16降解菌后，大豆全氮含量增加达24.93%，这一方面受益于接菌有效降解了土壤中氟磺胺草醚的残留，缓解了除草剂残留对大豆生长的抑制，另一方面接菌提升了大豆-根际系统的固氮潜力，增加了土壤中有效氮素的供应。由此可见，接种氟磺胺草醚降解菌Sinorhizobium sp. W16有利于大豆氮累积，促进大豆生长发育。

4 结论

（1）氟磺胺草醚施用剂量（以有效成分计）达到或超过450 g·hm^-2时会显著抑制大豆根生物量和根瘤固氮能力，同时显著降低根际土壤nifH基因丰度，导致大豆根际生物固氮受限。土壤脲酶活性、土壤氮循环相关微生物功能基因丰度受氟磺胺草醚影响逐渐降低又造成了土壤有机氮素转化受限，从而影响大豆生长。

（2）从大豆根瘤中分离获得的一株氟磺胺草醚降解根瘤菌Sinorhizobium sp. W16，其不仅有效地降低了氟磺胺草醚的残留量，还缓解了氟磺胺草醚对大豆-根际系统的土壤有机氮素转化，提升了大豆-根际系统中生物固氮能力，较好恢复了大豆植株生长。Sinorhizobium sp. W16降解菌在氟磺胺草醚污染土壤修复上具有较好的应用前景。